DANCR在人胚胎干细胞向内胚层分化中的调控功能

邓家成; 彭丽妹; 石颖鹏; 钟小敏

doi:10.13471/j.cnki.j.sun.yat-sen.univ(med.sci).20240004.007

您当前的位置：

首页 >

文章列表页 >

DANCR在人胚胎干细胞向内胚层分化中的调控功能

基础研究 | 更新时间：2024-02-22

- DANCR在人胚胎干细胞向内胚层分化中的调控功能
- DANCR Regulates hESC Differentiation Towards Definitive Endoderm
- 中山大学学报（医学科学版） 2024年45卷第1期页码：45-53
- 作者机构：
  
  中山大学中山医学院干细胞与组织工程研究中心，广东广州 510080
- 作者简介：
  
  邓家成，第一作者，研究方向：干细胞与再生医学，E-mail：1243280117@qq.com
- 基金信息：
  
  科技部国家重点研发计划(2017YFA0105501);广州市科技计划项目(202102080397)
- DOI：10.13471/j.cnki.j.sun.yat-sen.univ(med.sci).20240004.007
  中图分类号： R34
- 纸质出版日期：2024-01-20，
  
  收稿日期：2023-09-06，
  
  录用日期：2023-10-18
扫描看全文
邓家成,彭丽妹,石颖鹏等.DANCR在人胚胎干细胞向内胚层分化中的调控功能[J].中山大学学报（医学科学版）,2024,45(01):45-53.

DENG Jiacheng,PENG Limei,SHI Yingpeng,et al.DANCR Regulates hESC Differentiation Towards Definitive Endoderm[J].Journal of Sun Yat-sen University(Medical Sciences),2024,45(01):45-53.
邓家成,彭丽妹,石颖鹏等.DANCR在人胚胎干细胞向内胚层分化中的调控功能[J].中山大学学报（医学科学版）,2024,45(01):45-53. DOI： 10.13471/j.cnki.j.sun.yat-sen.univ(med.sci).20240004.007.

DENG Jiacheng,PENG Limei,SHI Yingpeng,et al.DANCR Regulates hESC Differentiation Towards Definitive Endoderm[J].Journal of Sun Yat-sen University(Medical Sciences),2024,45(01):45-53. DOI： 10.13471/j.cnki.j.sun.yat-sen.univ(med.sci).20240004.007.

摘要

目的

探讨DANCR在人胚胎干细胞（hESC）向内胚层（DE）分化中的作用。

方法

建立体外诱导hESC向DE分化的体系，检测DANCR的表达水平与DE分化的相关性；利用慢病毒体系敲低hESC的DANCR表达水平，将敲低DANCR的hESC进行DE分化；用qPCR和Western blot方法检测DE分子标志物SOX17和FOXA2，以及原条分子标志物Brachyury （T），EOMES，MIXL1和GSC的表达水平；用Dual luciferase reporter assay和qPCR证明在DE分化过程中DANCR与WNT通路的相互作用。

结果

体外诱导hESC向DE分化的体系能够有效模拟体内DE分化，DANCR的表达水平随DE分化进程逐渐下降。建立敲低DANCR的hESC细胞株，DANCR表达水平相比对照组显著降低（

0.001）。干扰DANCR表达使分化早期的原条分子标志物Brachyury （T），EOMES，MIXL1和GSC，以及分化后期的DE分子标志物 SOX17和FOXA2 的mRNA表达水平相比对照组显著降低（全部

0.05）。并且，在DE分化过程中，敲低DANCR组的WNT通路的转录活性相比对照组显著降低（

0.05），表现为WNT通路下游基因FZD5，FZD8，SFRP1，FRZB和ANKRD6 mRNA表达水平明显减少（

0.05）。然而，敲低DANCR对TGFβ通路的SMAD2/3和p-SMAD2 蛋白表达水平没有显著影响（

0.05）。人为激活细胞内β-CATENIN蛋白活性，能够有效回补由于敲低DANCR导致的DE分化缺陷。

结论

DANCR在DE分化过程中逐渐下调并促进DE分化发生，DANCR可能通过与WNT通路相互作用参与调控hESC向DE分化。

Abstract

Objective

To explore the function of DANCR during the differentiation of human embryonic stem cells （hESC） toward definitive endoderm （DE）.

Methods

The

in vitro

DE differentiation system was established and its efficiency was verified. The correlation between the expression level of DANCR and DE differentiation process was detected. Using lentivirus system， we stably knocked down DANCR in hESC. The shDANCR hESC line was applied to DE differentiation， using qPCR and Western blot to detect the expression of DE marker genes SOX17 and FOXA2， and that of primitive streak marker genes Brachyury （T）， EOMES， MIXL1 and GSC. Dual luciferase reporter assay and qPCR were used to confirm the interaction between DANCR and the WNT pathway during DE differentiation.

Results

The

in vitro

differentiation system mimicked DE differentiation efficiently. And the expression of DANCR was gradually downregulated during differentiation. DANCR was efficiently knocked down in the shDANCR hESC line （

0.001）. Compared with those in the control group， the expression levels of primitive markers Brachyury （T）， EOMES， MIXL1 and GSC， as well as DE markers SOX17 and FOXA2， were significantly decreased in shDANCR groups （

0.05）. Furthermore， the transcriptional activity of the WNT pathway in shDANCR groups was lower than that in the control group （

0.05）. And RNA levels of downstream genes of the WNT pathway， FZD5， FZD8， SFRP1， FRZB and ANKRD6， were significantly decreased in shDANCR groups （

0.05）. However， differences in protein levels of the TGFβ pathway effectors SMAD2/3 and p-SMAD2 were statistically insignificant in shDANCR and control groups （

0.05）. Forced activation of β-CATENIN rescued DANCR knock down-induced deficiency in DE differentiation.

Conclusions

The expression of DANCR decreases during DE differentiation. DANCR may promote DE differentiation through modulating the activity of the WNT pathway.

关键词

内胚层分化长链非编码RNADANCRWNT信号通路

Keywords

definitive endodermdifferentiationlong non-coding RNADANCRthe WNT pathway

references

Robb L， Tam PPL. Gastrula organiser and embryonic patterning in the mouse［J］. Semin Cell Dev Biol， 2004， 15（5）： 543-554.

Conlon FL， Lyons KM， Takaesu N， et al. A primary requirement for nodal in the formation and maintenance of the primitive streak in the mouse［J］. Development， 1994， 120（7）： 1919-1928.

Liu P， Wakamiya M， Shea MJ， et al. Requirement for Wnt3 in vertebrate axis formation［J］. Nat Genet， 1999， 22（4）： 361-365.

Nina S Funa， Karen A Schachter， Mads Lerdrup， et al. β-Catenin regulates primitive streak induction through collaborative interactions with SMAD2/SMAD3 and OCT4［J］. Cell Stem Cell， 2015， 16（6）： 639-652.

Takenaga M， Fukumoto M， Hori Y. Regulated nodal signaling promotes differentiation of the definitive endoderm and mesoderm from ES cells［J］. J Cell Sci， 2007， 120（12）： 2078-2090.

Wang S， Wang X， Tan Z， et al. Human ESC-derived expandable hepatic organoids enable therapeutic liver repopulation and pathophysiological modeling of alcoholic liver injury［J］. Cell Res， 2019， 29（12）： 1009-1026.

Teo AKK， Arnold SJ， Trotter MWB， et al. Pluripotency factors regulate definitive endoderm specification through eomesodermin［J］. Genes Dev， 2011， 25（3）： 238-250.

Fatica A， Bozzoni I. Long non-coding RNAs： new players in cell differentiation and development［J］. Nat Rev Genet， 2013， 15（1）： 7-21.

Prensner JR， Chinnaiyan AM. The emergence of lncRNAs in cancer biology［J］. Cancer Discov， 2011， 1（5）： 391-407.

Jia H， Liang K， Liu G， et al. LncRNA DANCR promotes proliferation and metastasis of breast cancer cells through sponging miR-4319 and upregulating VAPB［J］. Cancer Biother Radiopharm， 2022， 37（8）： 650-661.

Kretz M， Webster DE， Flockhart RJ， et al. Suppression of progenitor differentiation requires the long noncoding RNA ANCR［J］. Genes Dev， 2012， 26（4）： 338-343.

Su A， Yao K， Zhang H， et al. DANCR induces Cisplatin resistance of triple-negative breast cancer by KLF5/p27 signaling［J］. Am J Pathol， 2023， 193（3）： 248-258.

Tian W， Lei N， Guo R， et al. Long non-coding RNA DANCR promotes cervical cancer growth via activation of the Wnt/β-catenin signaling pathway［J］. Cancer Cell Int， 2020， 20（1）： 61.

Wen Z， Lian L， Ding H， et al. LncRNA ANCR promotes hepatocellular carcinoma metastasis through upregulating HNRNPA1 expression［J］. RNA Biol， 2020， 17（3）： 381-394.

Xiong M， Wu M， Dan P， et al. LncRNA DANCR represses Doxorubicin-induced apoptosis through stabilizing MALAT1 expression in colorectal cancer cells［J］. Cell Death Dis， 2021， 12（1）： 24.

巫孟师，熊敏敏，彭丹，等.构建MS2-RIP方法用于鉴定lncRNA DANCR在肿瘤细胞中的相互作用分子［J］.中山大学学报（医学科学版），2021，42（1）：24-32.

Wu MS， Xiong MM， Peng D， et al. MS2-RIP Assay for Identifying the Interaction Partners of lncRNA DANCR in Tumor Cells［J］. J Sun Yat-Sen Univ（Medical Sciences）， 2021， 42（1）： 24-32.

Li J， Yang Y， Fan J， et al. Long noncoding RNA ANCR inhibits the differentiation of mesenchymal stem cells toward definitive endoderm by facilitating the association of PTBP1 with ID2［J］. Cell Death Dis， 2019， 10（7）： 492.

Yuan SX， Wang J， Yang F， et al. Long noncoding RNA DANCR increases stemness features of hepatocellular carcinoma by derepression of CTNNB1［J］. Hepatology， 2015， 63（2）： 499-511.

浏览量

下载量

CSCD

文章被引用时，请邮件提醒。

提交

工具集

关联资源

长链非编码RNA GAPLINC对类风湿关节炎成纤维样滑膜细胞增殖表型的影响

构建MS2-RIP方法用于鉴定lncRNA DANCR在肿瘤细胞中的相互作用分子

PTBP1介导长链非编码RNA RP11-879F14.2发挥抑制心肌纤维化的作用

组蛋白H3的22个赖氨酸去甲基化酶对胎鼠棕色脂肪细胞分化的调控作用